链霉亲和素(streptavidin,sa)为streptomyces avicllrdi菌培养过程中的分泌产物。是大小为66kda的四聚体蛋白,一分子链霉亲和素可以高度特异性地与四分子生物素结合,链霉亲和素-生物素复合物的解离常数处于10-14mol/l数量级,是已知自然界中的非共价相互作用之一。其特别的结构特性使其广泛应用于免疫学中elisa检测信号的放大。sa亦可用于免疫微孔板、免疫层析硝酸纤维素膜、基因芯片,快速固定生物素化的抗原、抗体、核酸等物质,偶联nhs磁珠、树脂微球,广泛应用于发光诊断、生物素化物质分离、磁性试纸条免疫层析等方面。
产品信息
货号
sekf117
名称
链霉亲和素包被板
材料
聚苯乙烯
说明
透明,96孔板,预包被链霉亲和素
检测方法
比色
储存
2℃-8℃
类型
检测板,免疫分析,elisa
产品特点
1
使用sa包被板进行的测定扩展了定量范围,从而降低了稀释需求,使其具有更宽的动态范围;
2
标准曲线在检测小生物素化分子(例如多肽和寡核苷酸)方面表现出更大的线性,使得测定精度更高;
3
孔板预先包被并封闭,可减少测定步骤、节省时间,同时提高了铺板均一性,避免实验误差;
4
包被板以8孔联排形式提供,可减少浪费。
同类产品对比
01
测定包被板结合活性
1.用200μl洗涤缓冲液冲洗预包被酶标板,每孔三次;
2.准备1mg/ml的bio-hrp溶液,用1:2000的稀释度对第一孔进行1:2连续倍比稀释,在室温下孵育1小时;
3. 用200μl洗涤缓冲液清洗每孔4次;
4.用100μl底物溶液室温孵育15分钟;
5.加50μl终止液,测量每个孔的吸光度。
结果显示:本公司所产sa包被板结合活性与x品牌及y品牌平行,甚至更优。
02
双抗夹心法检测
1.用200μl的wash buffer洗涤预包被酶标板,每孔三次。在每孔中加入100μl生物素化捕获抗体,在室温振荡孵育60分钟;
2.用200μl的wash buffer洗涤每孔四次,连续稀释抗原,64ng/ml作为高点,同时设置0孔,每孔加100μl。在室温振荡孵育60分钟;
3.用200μl的wash buffer洗涤每孔四次。在每个孔中加入100μl一抗,室温振荡孵育60分钟;
4.用200μl的wash buffer洗涤每孔四次。每孔加入100μl酶标二抗。在室温振荡孵育30分钟;
5.用200μl的wash buffer洗涤每孔四次。每孔加入100μl底物溶液室温孵育20分钟;
6.加50μl终止液,测量每个孔的吸光度。
结果表明:本包被板显色更高,拟合曲线优于x品牌及y品牌。
03
稳定性检测
将包被好的sa板条放于37℃进行加速稳定性实验,放置16天(约4℃放置24个月),随后取出进行结合活性检测。
结果显示:考核16天后,结合活性od值变化不大且梯度良好,表明包被板稳定性良好。
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