一、细胞传代
1. 试验预备:200ul/1mltip头各一盒(以上物品均需高压灭菌),酒精棉球,废液缸,试管架,微量移液器,记号笔,培育皿,离心管。
2. 弃掉培育皿中的培育基,用1ml的pbs溶液洗刷两次。
3. 用tip头参加1ml trypsin液,消化1分钟(37℃,5%co2 )。用手轻拍培育瓶壁,观察到细胞*从壁上脱落下来为止。
4. 参加1ml的含血清培育基停止反应。
5. 用tip头多次吹吸,使细胞*分散开。
6. 将培育液装入离心管中,1000rpm离心5min。
7. 用培育液重悬细胞,细胞计数后挑选0.8x106个细胞参加一个35mm培育皿。
8. 将适宜体积*培育液参加离心管中,混匀细胞后轻轻参加培育皿中,使其均匀分布。
9. 将培育皿转入co2培育箱中培育,第二天转染。
二、细胞转染
1. 转染试剂的预备
① 将400ul去核酸酶水参加管中,震动10秒钟,溶解脂状物。
② 震动后将试剂放在-20摄氏度保存,使用前还需震动。
2. 挑选适宜的混合份额(1:1-1:2/脂质体体积:dna质量)来转染细胞。在一个转染管中参加适宜体积的无血清培育基。参加适宜质量的myod或者egfp的dna,震动后在参加适宜体积的转染试剂,再次震动。
3. 将混合液在室温放置10―15分钟。
4. 吸去培育板中的培育基,用pbs或者无血清培育基清洗一次。
5. 参加混合液,将细胞放回培育箱中培育一个小时。
6. 到时后,依据细胞品种决定是否移除混合液,之后参加*培育基持续培育24-48小时。
三、第二次细胞传代
1. 在转染后24小时,观察试验结果并记录绿色荧光蛋白表达情况。
2. 再次进行细胞传代,依照免疫染色适宜的密度0.8x105个细胞/35mm培育皿将细胞重新转
入培育皿中。
3. 在正常条件下培育24小时后依照染色要求条件固定。
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