蛋白免疫印迹的基本原理及操作步骤

基本原理:免疫印迹(western blot) 采用的是聚丙/烯酰胺凝胶电泳,被检测物是蛋白质,“探针”是抗体,“显色”用标记的二抗。sds-page 可对蛋白质样品进行分离,转移到固相载体——例如硝酸纤维素薄膜(nc)上。固相载体可以吸附蛋白质,并保持电泳分离的多肽类型及其生物学活性不变。转移后的 nc 膜就称为一个印迹(blot),用蛋白溶液(如 5%bsa 或脱脂奶粉溶液)处理,封闭 nc 膜上的疏水结合位点。用目标蛋白的抗体(一抗)处理 nc 膜——只有待研究的蛋白质才能与一抗特异结合形成抗原抗体复合物,这样清洗除去未结合的一抗后,只有在目标蛋白的位置上结合着一抗。用一抗处理过的 nc 膜再用标记的二抗处理,二抗是指一抗的抗体,如一抗是从鼠中获得的,则二抗就是抗鼠igg 的抗体。处理后,带有标记的二抗与一抗结合形成抗体复合物可以指示一抗的位置,即是待研究的蛋白质的位置。
操作步骤:
1.组织或细胞裂解:将需要检测的细胞或组织样本进行裂解,以释放蛋白质。常用的裂解缓冲液包括ripa缓冲液和np-40缓冲液等。
2.蛋白质浓度测定:使用蛋白质浓度测定方法(如bca或bradford法)确定样品中的总蛋白质浓度。
3.蛋白质电泳:将样品中的蛋白质根据大小通过聚丙烯酰胺凝胶电泳(sds-page)分离。在电泳过程中,样品通常会与还原剂(如β-巯基乙醇)和离子变性剂(如sds)混合,以使蛋白质变性并带有负电荷。
4.转膜:将分离的蛋白质从凝胶转移到聚合物膜(通常是聚偏氟乙/烯膜或硝酸纤维素膜)上。这通常通过电泳转印(electroblotting)完成,其中将膜与凝胶层叠放置,并应用电流使蛋白质迁移至膜上。
5.阻断:将膜放入含有蛋白质阻断剂(如牛血清蛋白、脱脂奶粉或鱼胶)的缓冲液中,以阻止非特异性结合。
6.一抗孵育:将膜与目标蛋白质特异性的一抗(抗体)溶液孵育,使一抗与目标蛋白质发生特异性结合。
7.洗涤:用缓冲液反复洗涤膜,以去除非特异性结合的一抗。
8.二抗孵育:将膜与与一抗的宿主物种不同、带有酶标记的二抗孵育。二抗将特异性地与一抗结合。
9.再次洗涤:用缓冲液反复洗涤膜,以去除非特异性结合的二抗。
10.信号检测:添加特定底物(如光敏底物或发光底物),使酶标记的二抗产生可观察的信号。该信号通常是光辐射或发光。
11.成像和分析:使用化学发光设备(如x光片或光学成像系统)记录膜上的信号,并进行定量分析。ps:在每一步中因采用的具体实验方法不同, 可构成多种免疫印迹分析系统。

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